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Dra. Ximena Londoño 
COMO RECOLECTAR BAMBÚES

Dra. Ximena Londoño
Los bambúes debido a su naturaleza especializada y a su floración infrecuente, son plantas poco y mal recolectadas. Para realizar una buena recolección, se debe saber qué estructuras son más significativas taxonómicamente, qué información se debe recopilar, y cómo y qué partes se deben recolectar. Para todas las mediciones se recomienda el sistema métrico decimal. A continuación se listan las cosas prioritarias a tener en cuenta para llevar a cabo una buena recolección: (Soderstrom Young, 1983; Londoño, 1987 (traducción)):
1. El equipo de campo debe constar de machete, sierra o segueta, tijeras de podar, guantes gruesos, cinta métrica, libreta de campo, cámara fotográfica y altímetro.
2. Equipo Fotográfico: En el caso de que se tenga equipo fotográfico se debe fotografiar especialmente el hábitat y el hábito de la planta y algunos detalles espectaculares; se recomienda un lente normal y un gran angular.
3. Los datos generales a tomar antes de empezar a recolectar el material son: localidad, incluyendo además de la posición geográfica, las coordenadas de latitud y longitud, altura sobre el nivel del mar, tipo de hábitat, nombres comunes y usos a nivel local.
4. Las partes a recolectar son: culmo, hojas caulinares, ramas, follaje, inflorescencia y a veces rizoma. De estas estructuras se debe recolectar material para herbario, para preservar en líquido y material leñoso.
5. El material correspondiente a ramas de follaje, inflorescencias y hojas caulinares debe ser procesado en la prensa botánica, debidamente marcado y secado al sol o en secadores eléctricos o de kerosene; los segmentos de culmos, complementos de ramas y rizomas deben secarse al aire y marcarse separadamente.
6. La etiqueta que acompaña al espécimen de herbario tiene que ser concisa y contener la información más completa posible, sin incluir aquellos caracteres que puedan ser vistos en el espécimen por sí solos; debe llevar localidad, nombre del recolector, número de colección, fecha de recolección, altitud y descripción concisa del hábitat y de la planta.
7. Del culmo se debe recolectar un segmento con un mínimo de 2 nudos, partido o no longitudinalmente, y anotar tamaño (altura y diámetro), hábito, y densidad de los culmos/m2 (esparcimiento); en el nudo se debe observar si la línea nodal está solitaria o en sucesión continua, el tipo de arquitectura y el vestimento; y del entrenudo el tamaño, color, superficie, forma, estado (sólido o hueco), y contenido interno; este material se debe secar al aire preferiblemente.
8. De las hojas caulinares se debe recolectar un mínimo de dos por cada muestra de herbario para poder mostrar ambas superficies en el material de herbario; además, se debe anotar su duración sobre el culmo, variabilidad a lo largo del culmo, color y patrón cuando joven y cuando adulta, superficie, y textura; de la lámina caulinar se debe anotar la posición y duración sobre la vaina. Se recomienda recolectar las hojas caulinares del tercio medio por ser las más representativas en tamaño y forma; cuando la vaina es persistente se corta en la base donde está adherida al culmo. Al prensar este material las hojas muy grandes se pueden doblar o cortar.
9. De las ramas se deben recolectar uno o dos complementos representativos de un culmo maduro; cortar el segmento de culmo aproximadamente 5 cm arriba y abajo del nudo y recortar las ramas hasta unos 5 cm.  Tratando de incluirle el primer nudo. Se deben secar al aire removiéndoles todas las vainas. De las ramas se debe anotar su localización en el culmo, hábito y longitud, desarrollo intravaginal, infravaginal, o extravaginal; número de ramas y organización; origen con relación al nudo, posición con respecto al nudo y modificaciones si las hay como presencia de espinas.
10. Del follaje se deben recolectar ramas con hojas en estado joven y adulto, y anotar condición de la hoja después de cortada, hábito y color; una vez cortadas se deben prensar inmediatamente para evitar que se deshidraten y colocarlas sobre el papel periódico de tal manera que se vean ambas superficies de la lámina. Si el material se deshidrata, se debe humedecer colocándolo dentro de una bolsa plástica cerrada herméticamente o sumergiéndolo dentro de un tanque con agua. Las láminas foliares muy grandes se deben doblar cuidadosamente en varias partes.
11. De la inflorescencia se deben recolectar ramas con flores en todos los estados de desarrollo y anotar el hábito (erecto, laxo, colgante), su posición en la mata (ramas terminales o axilares), y el tipo de floración (total o parcial). En el caso de encontrar en el campo un bambú florecido junto a otro sin florecer, se debe recolectar cada planta bajo números separados, anotando las referencias necesarias.
12. Del rizoma se debe recolectar una sección de aproximadamente 50 cm. De longitud, dejando un segmento de culmo de 15 cm. Por encima del suelo. El rizoma se debe secar al aire removiéndole todas las brácteas y la tierra. Se debe anotar tamaño (longitud y diámetro), hábito, presencia o no de yemas en el cuello, y presencia y ubicación de raíces y raicillas.
13. Para estudios morfológicos y anatómicos se deben preservar varias partes de la planta en una solución fijadora denominada AFA (90 partes de alcohol al 50%, 5 partes de ácido acético glacial H (Ac), y 5 partes de formalina o formol diluido), y después de varios días en esta solución se transfieren a alcohol etílico al 70%. La solución AFA sufre esterilización así que no se puede conservar preparada por mucho tiempo.
14. Las partes de las plantas a preservar en FA son:
A) Follaje: Lámina foliar, y la parte que contiene el pecíolo y la lígula; las hojas pequeñas se conservan todas; de las hojas grandes se cortan un pedazo de 3-5 cm. , de largo en la parte media de la lámina, que incluya la nervadura central y parte de la margen.
B) Yemas: Preferiblemente se recolectan en diferentes estados de desarrollo. Todos los tejidos que protegen la yema deben conservarse.
C) Frutos carnosos: Deben conservarse en frascos separados y partidos en pedazos si son demasiado grandes.
D) Raicillas: Deben cortarse secciones de aproximadamente 2 cm de largo para preservación..
E) Plántulas:  Debe conservarse únicamente plántulas jóvenes con la semilla adherida aún en la base.
F) Porciones de culmo: Se deben conservar en el caso de que exhiban color y diseños infrecuentes, que se pierden durante el secado.
15. Para estudios citológicos se deben preservar espiguillas jóvenes fijadas en una solución de 3:1 durante 24 horas y luego se transfieren a alcohol de 70%, guardándolas en la nevera lo más pronto posible. La solución 3:1 se hace mezclando 3 partes de alcohol absoluto y 1 parte de ácido acético. Las espiguillas deben recolectarse de aquellas inflorescencias que aún están protegidas por la bráctea o justo comenzando a emerger.

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